enviado 10-06-2001 23:33         

Muy importante
Pests of Onion and Garlic
(Guía excelente con Nombres todos los patógenos (hongos, insectos, nematodes), síntomas, y formas de control y también control de malezas)
http://axp.ipm.ucdavis.edu/PMG/selectnewpest.onion-and-garlic.html

Trabajos y guías varias
Guia para cultivar Ajo en Aguascalientes
http://codagea.edoags.gob.mx/~produce/21.htm
EL CULTIVO DEL AJO
http://infoagro.com/hortalizas/ajo.asp
ESTUDIO Y EXPERIMETACIÓN EN EL CULTIVO DEL AJO EN LA CAMPIÑA-SUR CORDOBESA
http://leo.worldonline.es/montealb/estudio.html
MANEJO EN EL CULTIVO DEL AJO
http://www.agrogestion.cl/pub_cultivoajo.htm
Evaluación del comportamiento de dos variedades de ajo morado peruano y criollo venezolano en Curimagua
http://www.ceniap.fonaiap.gov.ve/publica/divulga/fd55/ajos.htm
Ajo (Fertilización - Fertiberia)
http://www.fertiberia.es/servicios_on_line/guia_de_abonado/ajo1.html

PRUEBAS DE ADAPTABILIDAD DE SEIS VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) CON RIEGO POR GOTEO EN LA COSTA DE HERMOSILLO, SONORA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/1.htm
EVALUACION DE SEIS VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN LA COSTA DE HERMOSILLO
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/2.htm
EVALUACION DE CINCO VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN LA COSTA DE HERMOSILLO
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/3.htm
ADAPTABILIDAD DE CINCO VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN LA REGION DE URES, SONORA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/4.htm
TRES DOSIS DE FERTILIZACION EN AJO (Allium sativum L.) CON LA VARIEDAD MORADO REGIONAL EN URES, SONORA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/5.htm
ESTUDIO DE CINCO VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN SANTIAGO DE URES, SONORA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/6.htm
EVALUACION DEL NEMATICIDA DITERA EN EL CULTIVO DE AJO (Allium sativum L.) EN LA VARIEDAD TAIWAN
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/7.htm
EVALUACION DE SIETE VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN SINOQUIPE
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/8.htm
EVALUACION DE CUATRO VARIEDADES DE AJO (Allium sativum L.) EN DOS DENSIDADES DE SIEMBRA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/9.htm
EVALUACION DE DIFERENTES DOSIS DE FERTILIZANTES EN TRES VARIEDADES DE AJO
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/10.htm
ALTA DENSIDAD EN AJO (Allium sativum L.) VARIEDAD CHINO PARA INCREMENTO DE RENDIMIENTO EN SIEMBRA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/12.htm
EVALUACION DE REGULADORES DE CRECIMIENTO EN LA VARIEDAD AMPELO
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/13.htm
EVALUACION DE TRES REGULADORES DE CRECIMIENTO EN LA VARIEDAD CHINO EN LA REGION DEL RIO SONORA
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/14.htm
ALGUNOS DATOS DE LA INVESTIGACION DEL CULTIVO DEL AJO EN LA COSTA DE HERMOSILLO
http://www.uson.mx/publicaciones/ajo/15.htm
IDENTIFICACIÓN DE LA NEMATOFAUNA ASOCIADA AL CULTIVO DE AJO Y CEBOLLA EN LA CAMPIÑA DE AREQUIPA Y ALREDEDORES (Resumen)
http://www.unsa.edu.pe/abiomedicas/bios/activbios10.html
Ajo (Lista bibliográfica)
http://www.inta.gov.ar/laconsulta/bibajo.htm
ANALISIS ECONOMICO - COMERCIAL DEL CULTIVO DE AJO ROSADO EN LA IX REGIÓN (CHILE)
http://www.agrogestion.cl/ga_AjoRosado.htm
DISEÑO DEL PRODUCTO Y OPTIMIZACIÓN DEL PROCESO DE DESHIDRATACIÓN DEL AJO (Allium sativum) CON LA METODOLOGÍA DE INGENIERÍA DE CALIDAD (Resumen)
http://ecologia.uat.mx/biotam/v2n1/art2.html

enviado 18-05-2005 17:36         

Responsable de la elaboración de este Protocolo: Vilma Cecilia Conci, INTA-IFFIVE, Camino 60 cuadras km 5,5 (5119) Córdoba, Argentina. TE: 0351-4973636

FAX: 0351-4974330 e-mail: vconci@correo.inta.gov.ar

Especie: Allium sativum (ajo)

Vía de regeneración: Especificar: Organogénesis directa

Establecimiento de los cultivos:

a) Explante utilizado

§ Especificar: meristema (constituido por el domo más 1 primordio foliar (0,3 mm aproximadamente). Hacer la extracción a partir de bulbillo (diente) despierto.

b) Desinfección del explante: para la extracción del meristema se corta un trozo de tejido en forma cúbica, incluyendo el disco basal donde está el meristema. Este se desinfecta mediante una inmersión en alcohol 70% y luego con hipoclorito de Na al 5 % durante 10-15 min. Posteriormente el trozo de tejido es colocado sobre papel estéril bajo una lupa estereoscópica dentro de una cámara de flujo laminar y con la ayuda de instrumental estéril se procede a la extracción del explanto. Luego de la escisión el explanto debe ser rápidamente sembrado en medio de iniciación donde se desarrollará una planta completa.

c) Medio de cultivo para el establecimiento :

Soluciones madre (Murashige and Skoog, 1964)

Compuestos Orgánicos

Thiamina..................................0,4 mg/l

Inositol.....................................100 mg/l

Acido Nicotínico.......................0,5 mg/l

Piridoxina..................................0,5 mg/l

Glicina...........................................2 mg/l

Sulfato de Adenina...................80 mg/l

Agar............................................6-7 mg/l

pH: 5,7

Medio de Iniciación (meristema)

Soluciones Madre y compuestos orgánicos

Sucrosa: 30 g/l

Hormonas: AIA......................0,1 mg/l

Cinetina................0,1 mg/l

e) condiciones de incubación: 21 C

Subcultivo:
a) Explante: plántula

b) Medio de cultivo

Medio de Multiplicación

Soluciones Madre y compuestos orgánicos

Sucrosa: 30 g/l

Hormonas: 2ip.........................3 mg/l

ANA.....................0,30 mg/l

c) Condiciones de incubación: 23-25 C

Enraizamiento:

a) Medio de cultivo: en el mismo medio de cultivo.

b) condiciones de incubación: 23-25 C

Rusticación y transplante ex vitro

Después de varios ciclos in vitro, muchas plantas bulbifican espontáneamente y otras deben ser inducidas. Repicando los plantines a un medio sin hormonas, con alto contenido de sacarosa y luz continua se consigue mejorar el porcentaje de bulbificación en algunos clones, o bien, se obtienen plantas más robustas que soportan el transplante a suelo sin dificultad.

Aclimatación:

Los minibulbillos obtenidos in vitro son cosechados y sembrados en suelo estéril compuesto por una mezcla de tierra/mantillo/arena (1/1/1). Las plantas que no forman bulbos son transferidas a suelo y mantenidas en cámara húmeda por un tiempo variable entre 15 y 20 días, luego son paulatinamente adaptadas a las condiciones naturales de humedad y temperatura.

Rendimiento de este protocolo: datos de eficiencia,

Tasa de multiplicación variable según cultivar alrededor 1/6 cada 8 semanas.

Observaciones:

Bibliografía:

Conci V. C.; Cafrune E. E.; Lunello P.; Nome S. y Perotto C. 2004. Producción de planas de ajo libres de virus. En Echenique, V., Rubinstein, C. y Mroginski, L. (Eds.). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal. Parte VIII, Cap. 6: 313-316. Ediciones INTA, Buenos Aires, Argentina. ISBN 987-521-138-9.

CONCI, V. C. 2004. Obtención de plantas libres de virus. En Echenique, V., Rubinstein, C. y Mroginski, L. (Eds.). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal. Parte VIII, Cap. 5: 303-312. Ediciones INTA, Buenos Aires, Argentina. ISBN 987-521-138-9.

CONCI, V.C. 1997. Virus y Fitoplasmas de ajo. In BURBA, J. L. 50 temas sobre producción de ajo. Vol. 3: 267-293. EEA-INTA La Consulta, Mendoza, Argentina.

CONCI, V.C. y S.F. Nome. 1991. Virus free garlic (Allium sativum L) plants obtained by thermotherapy and meristem tip culture. J. Phytopathology 132: 189-192.

MORICONI,D.N.; V.C.CONCI and S.F.NOME. 1990. Rapid Multiplication of garlic (Allium sativum L.) in vitro. Phyton-International Journal of Experimental Botany 51 (2): 145-151. ISSN: 0031-9457.

PEROTTO, M. C.; CONCI; V. C.; CAFRUNE, E. E.; ALOCHIS; P. and BRACAMONTE, R. 2003. Differences in the Response of Garlic Cultivars to the Eradication of Five Viruses. Phyton-International Journal of Experimental Botany: 233-240.